基因型 F- mcrA Δ(mrr-hsdRMS-mcrBC) ϕ80lacZΔM15 ΔlacX74 recA1 endA1 araD139 Δ(ara, leu)7697 galU galK λ- rpsL nupG /pMON14272 / pMON7124 产品说明 DH10Bac菌株主要用于生产重组杆状病毒分子（Bac-to-Bac杆状病毒表达系统）。该菌株中含有父本杆粒 bMON14272 、辅助质粒 pMON7124 ：父本杆粒 bMON14272包含 mini-F复制子, 卡那抗性基因, attTn7 位点和 lacZα互补因子；辅助质粒 pMON7124 含有 tnsABCD区（tnsABCD region supplies the transposition proteins required for insertion of the mini-Tn7 from the donor plasmid into its target site on the parent bacmid），具有四环素抗性，在细胞扩增过程中丢失，但可提高供体质粒pFastBac（具有庆大霉素抗性）转化后的基因转座效率。mcrA、mcrBC及mrr突变使DH10Bac菌株适合于克隆富含甲基胞嘧啶或甲基腺嘌呤的DNA（Therefore , genomic DNA , both  prokaryotic and eukaryotic, can be cloned efficiently in DH10Bac）。recA1和endA1的突变有利于插入DNA的稳定和高纯度质粒DNA的提取。ϕ80lacZΔM15 的存在使DH10Bac可用于蓝白斑筛选，DH10Bac感受态细胞经特殊工艺制作，pUC19质粒（2686bp，AmpR）检测转化效率>108cfu/μg DNA。 操作方法 供体质粒（pFastBac等）转化重组方法： 1. DH10Bac感受态细胞从-80℃拿出，迅速插入冰中，5分钟后待菌块融化，加入供体质粒（pFastBac等）1ng，并用手拨打EP管底混匀，冰中静置25分钟。 2. 42℃水浴热激45秒，迅速放回冰中并静置2分钟，晃动会降低转化效率。 3. 向离心管中加入900μl不含抗生素的SOC液体培养基，37℃，225 rpm复苏4小时。 4. 复苏完成后，用SOC稀释转化液到（10-1，10-2），每个稀释用吸取100ul铺一个LB平板（共涂3个平板），平板包含50ug/ml Kan，7ug/ml Gentamicin，7ug/ml tetracycline，40ug/ml X-gal，40ug/ml IPTG。 5. 将平板倒置放于37℃培养箱48h（抗生素含量较高，需在37度长时间培养才能挑到成功重组的合适克隆）。  阳性验证： 1. 挑10个白色的克隆，重新划线在LB平板（50ug/ml Kan，7ug/ml Gentamicin，7ug/ml tetracycline，40ug/ml X-gal，40ug/ml IPTG）。37度过夜培养。 2. 挑选白色的克隆，转接到含有50ug/ml Kan，7ug/ml Gentamicin，7ug/ml tetracycline的LB培养液中，过夜培养。 3. 使用试剂盒（QIAGEN cat. 12162）或异丙醇-醋酸钠法抽提重组质粒DNA（＞100kb）。 4. 使用PCR法分析重组质粒是否正确重组。 pUC19检测转化效率方法： 1. DH10Bac感受细胞态从-80℃拿出，迅速插入冰中，5分钟后待菌块融化，加入目的DNA（质粒或连接产物）并用手拨打EP管底混匀，冰中静置25分钟。 2. 42℃水浴热激45秒，迅速放回冰中并静置2分钟，晃动会降低转化效率。 3. 向离心管中加入700μl不含抗生素的无菌培养液LB，37℃，200 rpm复苏60分钟。 4. 取100μl转化液涂布到含50-100ug/ml氨苄的LB平板上。 5. 将平板倒置放于37℃培养箱12-16h，统计计算转化效率。 注意事项 1. 感受态细胞最好在冰中缓慢融化，插入冰中8分钟内加入目标DNA，不可在冰中放置时间过长，长时间存放会降低转化效率。 2. 转化高浓度的质粒可相应减少最终用于涂板的菌量。 3. 涂板时务必涂干，平板表面不留任何水份。 4. 若要获得大量，高纯度质粒，建议在TB培养基（唯地CAT#：CM1018L）中摇菌培养（以标准质粒PUC19为例：在TB营养液中过夜培养的菌体浓度和质粒产量为LB的3-4倍，SOC的2倍）